как правильно посадить саженцы при высоких грунтовых водах? В какую сторону прививкой сажать яблоню? Правила и последовательность действий

Наверно уже не осталось садовода, который бы не посадил на своем участке яблоню. Эти деревья не слишком капризны, и при должном уходе будут давать качественный урожай в течение 40 лет.

Сроки

На выбор у садовода два периода посадки – весенний или осенний. В случае осеннего срока предоставляется широкий выбор посадочного материала, но деревца, посаженные перед зимой, частично восстанавливают корневую систему, поэтому она ослаблена. Это одна из причин, почему такие яблони подготавливают таким образом, чтобы они были лучше приспособлены к посадке.

Осенние посадки менее надежны по выживаемости деревьев, чем весенние.

При температуре воздуха выше 4°C корни будут хорошо расти. Деревце, высаженное осенью, имеет все шансы укорениться перед наступлением зимы, а весной начинается рост. Однако если ожидается холодная зима, лучше сохранить яблони до весны и тогда начать посадку, так как корни могут легко промерзнуть в земле.

Наиболее подходящее время посадки осенью – вторая декада октября или начало ноября.

В Сибири, в Подмосковье и на Урале посадка весной начинается в ранний период, сразу после прогрева земли. Сажают деревья без развитых листьев. Чем более развитые яблони сажать, тем хуже будет их рост. Преимущество посадки деревьев весной – меньше риск повреждений при низкой температуре. Очень важно выбрать подходящий срок весенней высадки, поскольку она не может проводиться слишком поздно. Задержка посадки осенью уже не так рискованна, как весной.

Саженцы яблони в контейнере можно высаживать в любой период времени. Процедура проводится только в пасмурные дни, независимо от выбранного срока. Лучше всего высаживать деревья сразу после покупки.

Выбор саженца

При покупке саженцев из питомника следует обратить особое внимание на их состояние здоровья. Растения должны иметь свежий вид – кора на побегах гладкая, блестящая, без признаков заболеваний.

Деревья, находящиеся в продаже, должны иметь этикетку с информацией о производителе, названии вида, сорте, типе и возрасте. При транспортировке из питомника корневую систему следует защитить от пересыхания, а после привоза саженца на участок немедленно посадить.

Где можно сажать?

Выбирать место для посадки лучше заранее. Рядом с большими деревьями в тени яблоне будет сложно расти. Многие садоводы предпочитают высаживать плодовые деревья на холм.

Посадка на ровном месте

Непосредственно перед высадкой осматривают корневую систему и ножницами обрезают поврежденные или слишком длинные корни. Посадка начинается с вбивания в выбранном месте деревянного кола, который будет являться опорой для деревца.

Кол устанавливают с западной стороны, на расстоянии 10-12 см от ствола. Размер лунки должен быть адаптирован к размеру корневой системы. При посадке обратите внимание, чтобы корни свободно располагались в яме и не были свернутыми. Средний размер лунки – 40-50 см в диаметре и 30-40 см в глубину.

Дно стоит удобрить навозом, компостом или торфом, которые повышают плодородие почвы. Саженцы сажают на 2-3 см глубже, чем они росли в питомнике, и таким образом, чтобы место прививки находилось над поверхностью почвы. После покрытия корней грунт вокруг следует утрамбовать. Вокруг ствола формируют в земле углубление, называемое бачком, он облегчает сбор воды.

Посадка на холмах

Этот метод рекомендован в тех случаях, когда на участке наблюдается высокий уровень грунтовых вод или есть признаки усталости почвы. Процесс заключается в посадке деревьев на небольших возвышенностях и закреплении их в двух местах к кольям.

После установки саженцев и их подвязки проволокой закапывают корневую систему землей с компостом, образуя вал высотой 30 см.

Саженцы следует высаживать в пасмурный день, чтобы не допустить пересушку корневой системы. Можно также сначала сформировать вал, а потом сажать яблони традиционным методом, выкапывая отверстия в холме. При этом методе есть, однако, риск обнажения корневой системы и повышения ее чувствительности к заморозкам.

Как подготовить яму?

Специалисты советуют подготавливать посадочную яму заранее, а не непосредственно перед посадкой саженца. Подготовку следует проводить не менее чем за шесть месяцев до высадки яблони, если она будет производиться осенью, а для посадки весной – не менее чем за три месяца.

Делается это для укрепления стен ямы. Плодородная почва не позволит эрозии негативно сказаться на осыпании стен, когда изменится положение грунтовых вод. Это требование не соблюдают начинающие садоводы, в результате:

• плохой рост;
• слабое развитие главного побега;
• позднее плодоношение.

Размер ямы для высадки растения в глинистой и в песчаной почве также будет отличаться. Не всегда целесообразно погружать саженец яблони глубоко, иногда расстояние близко к поверхности приносит лучший результат.

Работа выглядит следующим образом:

• сначала выбираем место;
• вносим верхний слой плодородной почвы;
• устанавливаем в посадочную яму кол;
• помещаем яблоневый саженец и подвязываем к опоре;
• заполняем яму землей и производим полив.

При высоком уровне грунтовых вод рекомендуется производить посадку молодых деревьев на холмы.

При подготовке ямы стоит помнить, что это дерево предпочитает грунт с нейтральным рН. Непосредственно перед высадкой учитывайте, насколько почва влажная. В том случае, если накануне прошел дождь, тогда посадка откладывается, если наблюдалась засуха, то в яму сначала наливают воды, чтобы дерево лучше прижилось. Не менее важно на этом этапе убрать ненужные корни, пользы от них мало, только нарушат естественный рост.

От возраста и сорта будет зависеть ширина и глубина посадочной лунки. У годовалых колониальных деревьев глубина погружения 50 сантиметров, такая же и ширина. Если сорт обычный, не высокорослый, то метр на метр.

Следует принимать во внимание и габариты корневого шара. Деревья, которым уже два года, требуют лунки 1 м в ширину и 1,20 м в глубину. В случае, если это карликовый сорт, можно сделать 50 см ширину и 70 см глубину.

В песке и в глине не менее важно использовать смесь питательных веществ перед посадкой. Как правило, на один саженец необходимо будет подготовить следующую смесь:

• 2 ведра перепревшего перегноя или допускается использование компоста;
• пара ведер торфа;
• суперфосфата потребуется 1 килограмм;
• зола.

Половина вырытой ямы заполняется указанной смесью, остальная часть грунтом, который выкопали до этого. Можно вместо золы положить:

• 150 граммов сульфата калия;
• 100 граммов хлорида калия.

Яблоневое дерево хорошо растет и с органикой, это может быть перегной или компост. Азотные подкормки в смесь для заполнения не добавляются, так как негативно влияют на уровень выживаемости.

Известь использовать тоже нельзя.

Важно заранее узнать состав почвы, где собираются производить посадку. Если это глина или песок, можно воспользоваться специальным покупным грунтом или высадить дерево с землей из питомника.

Примечание: нельзя добавлять навоз не перепревший, особенно это правило касается куриного помета. В данном конкретном случае это яд, он вырабатывает аммиак и сероводород, а они, в свою очередь, приводят к отравлению корневой системы яблони.

Если на участке песчаный грунт, можно разбавить его слоем глины, около 10 см. Таким образом, увеличивается способность грунта сдерживать влагу.

После высадки и уплотнения грунта земли должно быть около 20 см над уровнем почвы. Со временем она осядет. Не менее важно расположение корневой шейки. Она:

• должна быть над землей;
• находиться на южной стороне;
• быть неповрежденной.

В противном случае это может привести к гниению дерева или к его смерти.

Подготовка посадочного материала

Перед тем как молодое дерево будет перенесено в грунт, его потребуется выдержать в особом составе. Корневую систему погружают в жидкую смесь глины и грунта или навоза с землей. Консистенция – густая сметана. 2-3 часов достаточно, допускается оставить яблоню на ночь. В качестве дополнения можно использовать стимулятор роста.

Схема и расстояние от забора

Существует строго регламентированное расстояние, на котором стоит сажать яблоню от забора. Учитывается размер дерева в первую очередь. Если дерево относится к высокорослому сорту, тогда это 4 метра, для карликовых – не менее 2 метров.

Тогда, когда саженцы высаживаются группами, используется схема рядами. Грядки рекомендовано располагать с востока на запад, поскольку крона должна хорошо освещаться у всех деревьев.

Высокорослые сорта требуют расстояния между посадками не менее 6 метров. У низкорослых яблонь крона в диаметре небольшая, поэтому достаточно и 4 метров.

С колонновидными деревьями все обстоит иначе, тут основная схема – 1*1 метр между яблонями и 1.5 метра между рядов.

Технология посадки

Если знать, как правильно посадить молодую яблоню на участке, то она лучше приживется и не доставит лишних хлопот. В зависимости от того, высаживается черенок или дерево с закрытой корневой системой, правила посадки будут отличаться.

Черенками

Вырастить молодое дерево из черенка непросто, потребуется гораздо больше усилий. Последовательность действий тут играет решающую роль. Нужно понимать, что с момента среза черенка до высадки его в грунт порой проходит около года.

Процесс выглядит следующим образом.

• В качестве материала используются однолетние побеги, связанные между собой под углом. Их приблизительная длина – от 30 до 40 см, при этом на побеге должно быть 5-6 почек.
• Срезанные ветки ставят в воду, куда предварительно добавляют стимулятор роста. Лучше сделать сразу несколько таких черенков, чтобы потом выбрать наиболее жизнеспособные.
• Как только появится корневая система, саженец переносят в грунт под парник.
• Появление зеленых почек свидетельствует об укоренении молодого дерева.
• Обязательно производят регулярный полив, но только тогда, когда грунт начинает подсыхать. Лучше это делать с пульверизатора.
• Парник при хорошей и солнечной погоде открывают на некоторое время. Так молодая яблоня учится адаптироваться к окружающей среде.
• На постоянное место в саду переносят побег, у которого появилось уже несколько веток с листьями.

Такая яблоня хорошо растет практически на любой почве, за исключением слишком известковой. Оптимальный уровень рН колеблется от 5,5 до 6,7. Деревья на подвое М9 нуждаются в почвах плодородных и достаточно влажных, а деревья М11 и ММ106 можно высаживать также на песчаных грунтах.

Рекомендуется производить посадку молодых яблонь, выращенных с черенков, на освещенных участках. Высокорослые деревья не переносят грунтовые воды, поэтому на месте высадки последние должны находиться в 150 см от поверхности земли.

Не менее важно тщательно подготовить почву для дерева, выращенного с черенка. Если садовод обеспечивает растениям хорошие условия для роста, то такой уход способствует раннему вступлению деревьев в период плодоношения. Почву следует в первую очередь обогатить минеральными и органическими удобрениями, отрегулировать кислотность. Приступать нужно как можно раньше, по крайней мере, за шесть месяцев перед посадкой. Можно внести навоз или компост. Доза первого должна составлять 5-7 кг/1 м2.

С закрытой корневой системой

Привитые деревья с закрытой корневой системой сажать удобнее, поскольку в этом случае стресс для яблони минимальный, а корневая система практически не травмируется. Порядок проведения процедуры следующий.

• Яблоню потребуется вынуть из контейнера, в котором ее привезли, вместе с питательной смесью и погрузить на дно посадочной ямы.
• Если дерево находилось в контейнере из торфа, то его высаживают прямо так.
• Корневая шейка должна находиться чуть выше уровня грунта, как и место прививки, поэтому стоит направить саженец таким образом, чтобы глубина его погружения строго соблюдалась.
• Затем насыпают первый слой земли, утрамбовывают руками, чтобы убрать воздушные «карманы».
• Производят легкий полив, снова засыпают землю в посадочную яму, полностью заполняя ее и насыпая даже горку высотой 20 см.

Неважно, в какой срок производить высадку, допускается проводить процедуру даже летом. В первый год не нужно ждать от яблони большого роста, за этот период она должна только хорошо укорениться.

Примерно за три месяца перед посадкой нужно удобрить почву. С этой целью выкапывают яму габаритами 1 м и глубиной 80 см. На дно устанавливают кол длиной, равной параметрам ствола плюс 1 метр. В землю добавляют комплексное удобрение для плодовых деревьев.

Непосредственно перед посадкой выкапывают лунку чуть больше объема корневой системы. Удаляют поврежденные корни, а остальные подрезают. Чтобы дерево лучше принялось, желательно погрузить корни в грязевую ванну, о которой речь шла выше.

Рекомендуется выращивать яблони двухрядными полосами. Наиболее часто используемые расстояния составляют 3,5 х 1-1,5 м для небольших яблонь и 4 х 2-2,5 м для высокорослых.

Последующий уход

Правильное выращивание яблонь – процесс, состоящий из нескольких этапов:

• обрезка;
• полив;
• опрыскивание;
• подкормка.

Обрезка

Вновь посаженые саженцы весной обрезаются в марте или апреле. Если яблоня высаживается осенью, то обрезаем ее в первую весну, а деревья, посаженные с приходом тепла, – сразу же после посадки. Обрезка яблони после посадки – первый шаг в формировании кроны дерева.

Дерево с неразветвленной кроной, то есть с одним центровым стволом, обрезаем на высоту от 70 до 90 см. От этого места дерево начнет выпускать боковые побеги. Если мы хотим, чтобы под яблоней было больше места, следует проводить обработку еще выше.

Если сажаем дерево с главным и несколькими боковыми побегами, тогда обрезка после посадки заключается в формировании 3-7 побегов, расположенных горизонтально или слегка наклонно и удаленно от остальных. Оставленные ветви слегка сокращаем на 1/4 или 1/3 длины, главный ствол также немного подрезаем, чтобы стимулировать его рост.

В дальнейшем ухаживать за деревом необходимо каждый год. Подвязка молодых саженцев обязательна.

Полив

Как бы это смешно ни звучало, но поливать молодые яблони необходимо правильно. Саженцы требуют еженедельного полива в периоды небольших осадков или их полного отсутствия, особенно в течение первых 2 лет жизни. Не у многих садоводов получается соблюдать режим, поэтому рекомендовано использовать мульчу.

Слой подстилки, толщиной 5-7 см, сделанной из листьев, хвои или коры, позволит сдержать рост сорняков. Покрывают грунт вокруг ствола на расстоянии 50 см и более.

Мульча не должна касаться дерева. Также следует избегать использования в качестве подстилки коры дуба или других твердых пород дерева, так как они поглощают азот из почвы, что может иметь негативное влияние на яблоню.

Опрыскивание

Одно из страшнейших грибковых заболеваний, безусловно, парша. В результате активности возбудителя поражению подвергаются листья, плоды, побеги и цветы. В итоге происходит подавление роста яблони, листья засыхают, после чего опадают. Плоды с многочисленными пятнами, трещинами искажаются и теряют свою ценность.

Неплохо помогает препарат Antracol 70. На более поздних сроках используют препарат Miedzian 50. Кроме того, после сбора урожая стоит выполнить опрыскивание пораженного дерева 4-5% раствором мочевины.

Подкормка

Бывает и так, что у яблони на даче листья потемнели или она больше не растет. Не всегда это признак болезни, иногда причина в нехватке питательных элементов. Качественная подкормка требуется в разные вегетационные периоды, но чтобы не навредить дереву, ее стоит проводить правильно.

Удобрение с содержанием азота, фосфора и калия (10-10-10) подходит для этого фруктового дерева. Следует его применять ранней весной, пока почки только проклюнулись.

Подкормка распределяется равномерно под деревом и рассыпается по всей ширине околоствольного круга. Если яблоня растет на газоне, который также потребляет в большом количестве с почвы микроэлементы, то стоит увеличить дозу.

особенности и техника проведения процедуры

Прививку плодовых деревьев можно проводить в разное время года. Оптимальное время для прививки яблонь, груш – весна. Многие садоводы успешно выполняют эту процедуру зимой. Срастаемость подвоя и черенка будет высокой, если выполнять прививку правильно. 

 

Содержание:

 

Особенности прививки зимой

Прежде чем приступать к проведению зимней прививки плодовых деревьев следует заготовить прививочный материал. Выполняют прививку в комфортных условиях, в помещении. Лучшее время для проведения процедуры – декабрь-январь. Зимняя прививка в отличие от окулировки имеет множество преимуществ. Выполняют процедуру не на улице, а сидя дома. При проведении зимней прививки глазки приживаются очень быстро, а от морозов глазки могут просто погибнуть. 

 

Если выполнять прививку яблонь в зимнее время, то период выращивания саженцев сокращается. Подвои желательно выбирать с культурных и выносливых сортов яблонь. Они имеют более развитую корневую систему. Выкапывать подвои следует в конце осени. Хранить их нужно в холодном помещении, где температура будет не более 2 градусов. Для хранения подвои следует обернуть свежими опилками. 

 

 

Прививочный материал нужно заготовить заранее до наступления морозов. Если срезать черенки позже, то это не гарантирует рост растения. Черенки следует выбирать здоровые и вызревшие. Их толщина должна по возможности соответствовать диаметру подвоя. Хранят черенки в том же месте, где и подвои. Необходимо избегать переувлажнения. 

Инструменты для прививания

У садовода для работы в огороде и ухода за растениями имеется много инструментов. Для каждой процедуры нужны определенные инструменты. Чтобы выполнить прививку, понадобятся следующие инструменты:

• Острый нож
• Садовая пила
• Для обвязки пакет или лента
• Садовый вар

1. Привой подготавливается с начала зимы, когда дерево будет в состоянии покоя.
2. Срезать черенки можно и ранней весной, до того как набухнут почки. 
3. Ветки нужно выбирать здоровые с ростом вверх. Длина их должна быть не менее 30 см. Срезать ветку нужно под косым углом. Для зимней прививки лучше подходят карликовые сорта яблонь. 

Как проводится прививка яблонь зимой

Выполнять прививку желательно тогда, когда растение находится в покое. Многие садоводы проводят прививку уже в конце января. Это зависит от региона и погодных условий. Если зима суровая, то выполнять процедуру следует в конце зимы, чтобы избежать больших потерь.  Острым ножом, предназначенным специально для прививки, сделать косые срезы на черенке и подвое около 3 см длинной. Далее срез на расстоянии 1/3 от верхушки расщепить ножом. Затем места срезов совместить, чтобы язычок среза черенка вошел в открытую щель подвоя. Бывает так, что толщина подвоя больше толщины черенка. В этом случае после их совмещения выступ подвоя срезать. 

Затем место соединения прививочных материалов обвязать синтетической лентой с шириной около 10-12 мм. Лучше использовать поливинилхлоридную или полиэтиленовую пленку. Далее все открытые участки покрыть садовым варом. 

Этот способ копулировки называется вприклад с язычком. Многие садоводы выполняют прививку за кору, если толщина подвоя больше, чем привой.Для повышения выхода саженцев можно выполнить парафинирование. Эта процедура снижает риск прорастания почек, улучшает срастание прививок. После прививки черенок опустить в парафин, предварительно разогрев до температуры 60-70 градусов. Затем вынуть и уложить горизонтально в подготовленные мешки или ящик с опилками. 

Хранение прививки и высадка в грунт

После процедуры для хорошего срастания прививочных материалов на 2 недели их следует поместить в комнату, где температура будет около19 градусов. Этот период очень важно выдержать, так как от этого зависит приживаемость и выход саженцев. Регулярно нужно осматривать прививки. По истечении этого срока выдержать растение 14 дней при температуре 5-10 градусов, а перед высадкой в грунт при температуре 2-3 градуса. Хранят прививки в горизонтальном положении в ящике. Предварительно на дно уложить пленку и пересыпать прививки влажными опилками. Чтобы защитить прививку от мышей, вокруг ящика разложить приманку. 

 

Высаживают прививки весной. Участок, на котором будут размещаться прививки, должен быть хорошо подготовлен. Почву удобряют компостом. Прививки высаживают так, чтобы место соединения находилось на одном уровне с почвой. Если прививка будет расположена глубже, то снять повязку будет очень затруднительно. Затем прививку яблони окучивают землей, при этом верхнюю почку на черенке нужно оставить открытой.

 

Через месяц прививку открыть и убрать повязку. Нельзя допускать, чтобы в штамб врезалась обвязка. Далее проводятся обычные мероприятия по уходу за саженцами. Проведение зимней прививки яблонь не требует определенного подхода. Главное, соблюдать все этапы работ при выполнении процедуры. Успех выращивания зависит от своевременного и точного выполнения работ.

 

Видео о зимней прививке деревьев:

Яблоня на своих корнях

На этот раз мы снова возвращаемся к теме корневой системы яблони, но разговор пойдет не о подвоях, а о яблонях, растущих на «своих» корнях.

Я с этим вопросом столкнулся давно, а побудила к необычному эксперименту проблема, с которой сталкиваются многие садоводы – близкое залегание грунтовых вод и выпревание корневой системы.

Когда-то давно прочитал в журнале «Приусадебное хозяйство» заметку одного садовода, на участке у которого близко располагаются грунтовые воды, как ему один агроном посоветовал при посадке глубоко закопать саженец – сантиметров на 40. Да, по всем агрономическим нормам это нельзя делать – сопреет кора и дерево погибнет. Тот садовод попробовал, но дерево не погибло, а со временем пустило боковые корни. Нижняя часть с подвоем, скорее всего, всё-таки отмерла, а дерево перешло на собственные корни.

Я поначалу скептически отнесся к этой заметке, всё-таки явно противоречит общепринятым нормам. Но проблема с грунтовыми водами на нашем участке была. Деревья вырастали, постепенно погибали, при выкорчёвке обнаруживалась черная погибшая корневая система. Яблони приходилось периодически менять. На тот момент у нас было два однолетних саженца Грушовки, которые мне не очень-то хотелось сажать. Один саженец я использовал для прививки разных сортов, а со вторым решил поэкспериментировать и посадить его с заглублением в том месте, где яблони у нас обычно не росли. Если бы он погиб, я бы не сильно переживал.

Но это растение не погибло. Напротив, оно пошло в рост. Через пару-тройку лет уже отчетливы были видны новые горизонтальные корни, образовавшиеся на стволе у поверхности почвы. Это уже были сортовые корни, которые со временем стали достаточно мощные. Еще через несколько лет на этих корнях стали образовываться вертикальные побеги, это уже были не дички, а сортовая поросль. Её можно окучить для образования придаточных корней и потом отделить сортовой корнесобственный саженец, размножив таким способом яблоню.

Что же было дальше с этим растением? Выросла аккуратная яблоня, стала давать очень вкусные плоды. На горизонтальных сортовых корнях рядом со стеблем стали образовываться порослёвые побеги, которые я отделял как саженцы. Часть побегов оставлял на всякий случай, удалял их тогда, когда начинали мешаться. Когда материнское растение выросло и стало подавать признаки угнетенности (уменьшился прирост, увеличилась заболеваемость и т.д.), я стал из поросли растить замену. Когда подрастающему растению надо было освободить пространство, старый ствол пришлось выпилить до основания, а молодая замена, крепкая и здоровая, стала замещать утраченное дерево.

Суть данного метода заключается в том, что растение, переходя на собственные корни, способно восстанавливаться за счет поросли. Если у главного ствола и сокращается срок жизни в неблагоприятных условиях, ему можно заранее вырастить замену из порослевых побегов. Получается периодическое омоложение дерева.

Переход привитых растений на собственные корни возможен в различных ситуациях. Так, в питомнике можно наблюдать такое явление, когда в месте прививки не сняли обвязку, которая образовала перетяжку. Если прививка в этом случае была достаточно низко, а ствол присыпан выше прививки землей в результате междурядных обработок, тогда у привитого сорта образуются придаточные корни и растение переходит на собственную корневую систему.

Данным наблюдением не рекомендую всем, у кого рядом грунтовые воды,  глубоко закапывать саженцы, все-таки вероятность выпревания коры есть. Просто делюсь положительным личным опытом. А кто хочет его повторить – надо пробовать.

Тем, кто решит попробовать заглубленную посадку или захочет привитой саженец перевести на собственные корни, чтобы иметь корнесобственные деревья, можно рекомендовать обратить внимание на следующие моменты:

• Для заглубленной посадки или посадки с окучиванием лучше выбирать однолетние саженцы с хорошим приростом. Они активно растут и им легче будет образовать и развить придаточные корни.
• Для посадки лучше выбирать место без застоя воды, иначе при длительном замокании саженец просто выпреет. Или сажать на насыпные холмики.
• Почва в посадочной яме должна быть легкой и воздухопроницаемой, чтобы не задохнулась корневая система подвоя при глубокой посадке. При этом достаточно влагоёмкой для обеспечения молодых корней влагой. Для сохранения влаги в поверхностном слое, где будут образовываться корни, почву вокруг саженца можно замульчировать.
• Чтобы стимулировать образование придаточных корней, в месте их образования (у поверхности почвы) модно сделать продольные насечки коры, что будет способствовать более активному делению клеток и образованию корней.

Прививка и перепрививка плодовых деревьев

Весной все больше садоводов по телефону спрашивают у меня: «Когда можно приехать и приобрести саженцы?» Я рассказываю, что за январь и февраль привил 1000 яблонь и 2000 груш, в апреле-мае привью 1000 слив и абрикосов, а к осени эти саженцы вырастут.

И некоторые с ужасом в голосе спрашивают: «А вы что, их прививаете?» 

К сожалению, еще очень многие настолько неграмотны в вопросе производства саженцев, что им кажется — выросло деревце из семечка яблока — значит, яблоня, из груши — значит, груши. На самом деле так и происходит, только из тысячи выросших деревьев одно может оказаться неплохим сортом, а остальные 999 штук будут дички или полукультурки. А ведь садовод хочет купить саженец определенного сорта. Вот для этого и нужны прививки. 

Поэтому в питомнике необходимо выращивать не только сеянцы, которые выполняют роль подвоя, но и культурные деревья тех сортов, которые будут прививаться на дички. Это называется маточным садом. Если такого сада в питомнике нет, то нельзя быть уверенным, что вы приобрели саженец того сорта, который хотели. В таком случае производитель саженцев и сам не уверен в том, какие сорта он выращивает, так как привои он вынужден у кого-то покупать, а полной гарантии, что куплены черенки необходимого сорта, нет. 

Поэтому я рекомендую брать саженцы не на рынках, дорогах и в магазинах, а непосредственно в таком питомнике, где есть маточный сад, а значит, — больше надежды, что вы приобретете то, что хотели. 

И вот тут мы подходим к осознанию того, что каждый садовод сам может с помощью прививки вырастить в саду те сорта, которые захочет. Сделать это можно двумя путями. Первый — вырастить (или выкопать где-то в поле, лесу) дичок и привить его. Второй — перепривить уже имеющееся дерево на нужный сорт. 

У многих садоводов небольшие участки, а хочется иметь несколько сортов разных культур. Что делать? Многие в таком случае корчуют имеющееся старое дерево, высаживают два-три деревца на карликовом подвое и с оптимизмом заявляют: «Карлики большими не вырастут — их обрезать не надо». Наивные! Карлики необходимо ежегодно обрезать, да еще интенсивно кормить и поить, иначе они будут плодоносить два-три года после посадки, а потом перестанут, так как маленькая корневая система не сможет обеспечить питанием трехметровое дерево. Но даже если вы станете соблюдать всю технологическую цепочку — полив, питание и обрезку — будете собирать урожай лет десять максимум. А ведь мы в России привыкли сажать сад на долгое время. 

Долго расти и плодоносить могут только деревья на семенном подвое. Так что лучше не убирать старое дерево, а правильно обрезать его и перепривить на один или несколько сортов. 

В моем саду растут два дерева, посаженные предыдущим хозяином еще в 1947 году. В 1977-м я их сильно обрезал. И Антоновка до сих пор прекрасно плодоносит (с ежегодной обрезкой), а Грушовку я превратил в испытательный полигон — одну скелетную ветвь оставил, а на остальных побывало уже несколько новых сортов. И несмотря на то, что им уже по 70 лет, я регулярно получаю с них урожай. 

Как выбрать место прививки? 

Если у вас есть небольшой дичок, можно привить его в нижней части недалеко от корневой шейки, и тогда все растение будет того сорта, который вы привьете. Однако нельзя забывать о таком риске: часто в нашей зоне подмерзает именно нижняя часть ствола, так как наиболее низкие температуры зимой бывают на поверхности снега. Чтобы избежать этого, можно сделать прививку на высоте 80-100 см от поверхности почвы, и это будет называться «прививка на штамбе». 

Если же новый сорт более южного происхождения и сад у вас находится в проблемной зоне, то можно применить прививку в крону. Для этого четыре года назад я высадил в саду шесть дичков груши на постоянное место, все годы работал с кроной. Сейчас на них уже по три яруса скелетных ветвей и можно приступать к прививке. Морозобоины бывают не только на штамбе, но и в местах отхождения скелетной ветви от главного ствола, поэтому эти части я оставлю дикими (более устойчивыми к солнечным ожогам и морозобоинам), а прививку буду делать в 20-40 см от главного ствола. На нижние ярусы прививаю более зимостойкие сорта, начиная с третьего яруса — менее зимостойкие. 

Для тех, у кого мало места, лучше посадить одну яблоню и одну грушу надежных зимостойких сортов, а через три-четыре года верхнюю часть кроны перепривить более нежными и вкусными сортами. Количество сортов может быть практически не ограничено. У меня в саду росла груша, на которой было привито сорок сортов. Но желательно все же ограничиться тремя-пятью. 

Как прививать? 

Существует два вида прививки: окулировка и копулировка. Окулировка — это прививка глазком или почкой. Производится во второй половине лета, в основном специалистами на саженцах. 

Копулировка, или прививка черенком, имеет несколько способов: в пень, в расщеп, в боковой зарез и соединение подвоя и привоя одинакового диаметра. Самым надежным является последний. На нем я и остановлюсь. 

Копулировка производится обычно весной. Для того чтобы результат был надежным, желательно сделать прививку в оптимальный срок. Опытным путем давно определено, что в наших местах это бывает, когда цветет вишня. Обычно — первая декада мая. Да, сокодвижение начинается намного раньше, но для быстрейшего образования каллюса, а значит, и срастания привоя с подвоем, нужна довольно высокая температура. Тогда срастание происходит быстро и черенок не успеет высохнуть. 

Но черенки срезать необходимо заранее. Лучше в ноябре. Можно и в марте, до начала сокодвижения. Зимой их хранят в погребе, во влажном мху или в опилках. Можно в снежном бурте, но как только снег растает, необходимо перенести их в погреб или холодильник, поместив в полиэтиленовый пакет. Обычно за сутки до прививки я достаю привои из погреба, освежаю нижний срез и ставлю на ночь в ведро с водой, чтобы они набрали тургор. 

Прививать стараюсь рано утром, пока не жарко и нет сильного ветра. Подбираю на подвое место, где его диаметр равен диаметру привоя, и делаю косой срез длиной, равной 4-6 диаметрам. Так, если диаметр прививки 8 мм, то срез делаю 40 мм. Для более надежного соединения применяю способ улучшенной копулировки. Для этого, отступив на одну треть длины от верха среза, делаю ножом расщеп. Точно такие же операции повторяю и на привое. После этого соединяю оба среза встречным движением – так, чтобы язычок подвоя попал в срез привоя, а язычок привоя в срез подвоя. Предварительно обрезаю привой над третьей-четвертой почкой и плотно обматываю место прививки изоляционной лентой клейкой частью наружу. А верхний срез замазываю садовым варом. 

Для надежности можно на прививку надеть полиэтиленовый пакетик. Но как только увидите, что почки зазеленели, пакет надо снять. 

Для того, чтобы прививки были успешными, необходимо применять хорошо заточенный специальный нож. Приобретать необходимо копулировочный нож. Он бывает с прямым лезвием в отличие от окулировочного, лезвие которого изогнуто и заканчивается острым концом. Как правило, ножи продаются неправильно заточенными. Верхняя часть лезвия должна быть сточена, а нижняя, которая идет по срезу, плоская. Обычно заточку я делаю (после того как на точиле будет придана нужная форма) на бруске средней шероховатости, затем на мелком бруске (оселке) и окончательно довожу нож на ремне, смазанном пастой ГОИ. Обычно после 10-15 прививок поправляю нож на ремне, после 50 — на оселке, а после ста делаю полный цикл заточки. 

Оба среза должны быть абсолютно плоскими, без бугров и впадин, и абсолютно одинаковой длины. При соединении нигде не должно оставаться открытой древесины. Желательно прежде чем подходить к дереву, потренироваться на любых ветках. 

Как перепривить старое дерево? 

Обычно я совмещаю прививку на старом дереве со снижением кроны. Для этого с южной стороны кроны спиливаю один, два или три больших побега. Делаю это в 20-30 см от главного ствола. Они бывают в диаметре 10-20 см. Закрашиваю спил краской на натуральной олифе, и за лето около спила вырастает много однолетних побегов. Следующей весной могу начать формировку побегов для новой молодой кроны или использую их для прививки другими сортами. 

Таким образом, дерево омолаживается, да еще и добавляется другой сорт. Через три-четыре года, когда эти прививки заплодоносят, можно спилить и омолодить оставшиеся побеги старой кроны. 

Конечно, лучше один раз увидеть, как делается прививка, чем несколько раз прочитать. Поэтому всем, кто приезжает ко мне и просит показать, как это делается, я показываю. Уходит на это пять минут, и вы не только понимаете, как это делать, но и увозите с собой образец. Поэтому приезжайте. 

Отвечу на все вопросы по телефону 

8-910-542-42-61. 

Владимир Морозов 

 

 

Стимуляция роста яблонь в нестерилизованной почве в полевых условиях прививкой микоризы VA

Цитируется по

1. Влияние микоризной инокуляции на рост проростков цитрусовых и поглощение питательных веществ

2. ОТВЕТ ЯБЛОКА «ФУДЗИ» НА УДОБРЕНИЕ ФОСФОРА

3. Повышение роли биопродуктов в яблоках. Обзор

4. Питательный статус, вегетативное и генеративное поведение яблонь после применения двух биопрепаратов

5. Влияние инокуляции арбускулярной микоризой и добавления фосфора (P) на использование и рост кукурузы P в восстановленной почве горнодобывающей зоны

6. Грибы арбускулярной микоризы способствуют росту растений манго (Mangifera indica L.)

в поле

7. Влияние инокуляции микоризными грибами на урожай растений, усвоение питательных веществ и эффективность инокуляции в долгосрочных полевых условиях

8. Активность хитиназы, устойчивость к парше, скорость микоризации и биомасса трансгенного яблони с собственной и привитой корнями

9. Взаимодействие между растениями и арбускулярными микоризными грибами

11. Скрининг и отбор арбускулярных микоризных грибов для инокуляции микоризных микоризных подвоев яблони в кислых почвах

12. Mycorrhizal Valley of the

, История исследований арбускулярной микоризы

14. Долгосрочная жизнеспособность и инфекционность внутрирадикальных форм везикул Glomus intraradices, инкапсулированных в альгинатные шарики

15. Efeito de sizes micorrízicos arbusculares, da adubação fosfatada e da esterilização do Solo no crescimento de mudas de maracujazeiro amarelo

16. MYCORRHIZAL DEPENDENCY IN

ПЕРЕДАЧА

ОТНОСИТЕЛЬНО ПЕРЕДАЧИ 9000 ИЗОБРАЖЕНИЙ ИСТОЧНИКА 9000 ЗАПРЕТ НА ПЕРЕДАЧУ 9000 РИСУНОК

. грибов микорризикос арбускуларес на производстве мудас-де-маракузейро-амарело

18. Выделение меди из химических контейнеров для борьбы с корнями при производстве деревьев твердых пород

20. Микоризная инокуляция усиливает рост и усвоение питательных веществ микоризными подвоями яблони во время отъема на коммерческих субстратах с высокой доступностью питательных веществ

21. Применение арбускулярных микоризных грибов (AMF) в садовых и декоративных растениях

22 системы выращивания органических яблок в течение трех лет перехода на органическое управление в прибрежной Калифорнии

23. Характеристики качества почвы во время перехода на органическое управление садами

24. Внешняя потребность в фосфоре микоризных и немикоризных растений ячменя и сои

25. Показатели высаживания микоризных инокулированных сеянцев

26. ПОЛЕВЫЕ ОТВЕТЫ ТРЕХ ЛЕСНЫХ ССАДЕЦ 9000 9000 ВЗРОСЛЫХ 9000 9000 ПОСАДКОВ МИКРИЗА

коммерчески важных микроразмножающихся растений

28. Применение арбускулярных микоризных грибов (AMF) в садовых и декоративных растениях

29. Микоризная зависимость микоризного размножения арганового дерева (Argania spinosa): I. Рост и производство биомассы

30. Влияние поражающей корни нематоды Pratylenchus vulnus и микоризного гриба Glomus mosseae на рост яблони EMLA-26

31. Микоризные грибы в отношении роста и минерального питания проростков яблони

32. Ответ чили (Capsicum annuum L.) на инокуляцию эффективного везикулярно-арбускулярного микоризного гриба

33. Влияние инокуляции ВАМ на рост растений, уровень питательных веществ и активность корневой фосфатазы папайи (Carica papaya cv. Coorg Honey Dew)

34. Синергетическое взаимодействие между микоризными грибами VA и бактериями, солюбилизирующими фосфат, в перце чили (Capsicum annuum)

35. Восприимчивость почвы к VA микоризная ассоциация: концепция и метод

36. Улучшение деревьев с нуля: потенциал для избранного микробного инокулята в лесном хозяйстве

37. Роль VA-микоризы в росте и минеральном питании черенков яблони (Malus pumila var.domestica)

38. Болезнь при пересаживании яблони: влияние почвенного фосфора и других факторов на ростовую реакцию сеянцев яблони на окуривание почвы с хлорпикрином

39. Применение биотехнологии для улучшения подземных систем древесных растений

40. Влияние предтрансплантационной инокуляции микоризными грибами VA на последующий рост лука-порея в поле

41. Ответ эндомикоризного гриба в Allium porrum L. на различные концентрации системных фунгицидов, металаксила (Ridomil®) и фозетил-ала (Aliette®)

42. Использование микоризы в сельском хозяйстве

43. Поле реакция чили на микоризу VA на черной глинистой почве

44. КОЛОНИЗАЦИЯ И ЭФФЕКТИВНОСТЬ РАЗЛИЧНЫХ ЭНДОМИКОРРИЗНЫХ ГРИБОВ С ДВУМЯ ФОСФОРНЫМИ УРОВНЯМИ ЯБЛОКА

45. Микоризные и немикоризные корни лука-порея

46. Содержание липидов и состав везикул везикулярно-арбускулярного микоризного гриба

47. Реакция роста нескольких видов растений на микоризу в почве с умеренным Р-плодородием

48. Исследования микоризного синтеза VA: микоризный синтез: микориз аксенически размноженных растений дикой вишни (Prunus avium L.)

49. Микоризы и их значение для узловых азотфиксирующих растений

50. avium L.) растения

51. Предварительная инокуляция VA микоризой улучшает рост и урожайность пересаженного в поле перца чили и сохраняет фосфатные удобрения

52. Роль арбускулярной микоризы в органическом земледелии

Агрономия | Бесплатный полнотекстовый | Влияние микоризных грибов и PGPR на состояние питания и рост деревьев при производстве органических яблок

1. Введение

Четкая тенденция ограничения негативного воздействия плодовых культур на окружающую среду привела к росту интереса к производству органических фруктов в последние годы [1] .Органическое сельское хозяйство запрещает использование синтетических материалов, таких как пестициды и удобрения. В результате система очень требовательна к борьбе с болезнями и вредителями, а также к минеральному питанию растений, которые являются ключевыми факторами хорошего и сбалансированного роста и урожайности фруктовых деревьев [2]. С другой стороны, исследования показали, что методы с низким потреблением ресурсов, используемые в системах управления органическими продуктами, и меньшее поступление питательных веществ могут улучшить деятельность почвенной биоты, важнейшими компонентами которой являются арбускулярные микоризные грибы (AMF) [3,4].Грибы ответственны за характерный тип симбиоза, который происходит с большинством высших растений, называемый эндомикоризой. Арбускулярные микоризы (endomicorrhyzae, AM) установлены широко распространенными в природе биотрофными грибами с низкой специфичностью, принадлежащими к филюму Glomeromycota [5]. Его структуры в корнях растений очень различимы и их легко идентифицировать под микроскопом после окрашивания определенными типами красителей [6]. Многие авторы показали, что микоризные грибы могут улучшать статус минерального питания растений, но возможно и обратное действие [7].Участвующие в симбиозе растения, вступающие в контакт с полезными микоризными грибами, обладают способностью получать неорганические питательные вещества двумя путями: прямым путем через корневые волоски и корневой эпидермис непосредственно из почвенного раствора и косвенным путем (микоризный путь) с участием грибковый партнер. Поглощение, вызванное микоризой, требует сбора минералов через экстраматрические гифы из почвы и транспортировки их к арбускулам, где они передаются растению [8].Затраты на установление микоризного контакта с растением-хозяином — это углеводы, вырабатываемые во время фотосинтеза [9], которые являются единственным источником энергии для гриба [10,11] и, по оценкам, составляют до 20% от общей фотосинтетической продукции, в зависимости от от растительно-грибных факторов, а также от условий окружающей среды [12,13]. Основным питательным веществом, связанным с микоризой, является фосфор [14]. Есть много отчетов с четкими доказательствами того, что микориза поддерживает поглощение фосфора, особенно в почвах с низким содержанием этого питательного вещества [15,16,17].В свете предыдущих исследований, механизмы двустороннего обмена ассимилятов на фосфат-ионы Pi (H ₂ PO ^— и HPO ₄ ^2-), а также на нитрат (NO ₃ ^—) и аммоний Ионы (NH ₄ ⁺ ) были особенно хорошо известны как с физиологической, так и с молекулярной точек зрения. Исследования, проведенные Lopez-Pedros et al. [18] идентифицировали присутствие переносчиков аммония (AMT) и нитрата (NT), а также транспортных молекул в форме специфических аминокислотных пермеаз (AAP) во внешних гифах Glomus mossae.Следовательно, помимо неорганических форм, азот NH ₄ ⁺ и NO ₃ ^— также может быть получен AMF в форме аминокислот в результате разложения органических веществ [19]. О сильной корреляции между фосфором и калием, особенно в гифах и пузырьках грибов, сообщили Ollson et al. [20], подразумевает, что арбускулярная микориза также может улучшить усвоение калия. До сих пор небольшое исследование микоризы было посвящено феномену поглощения и обмена калия между микоризными партнерами [21].Из-за значительной роли этого питательного вещества в жизни растений и часто встречающегося низкого содержания доступных форм, особенно в почвах с высокими сорбционными свойствами, значение микоризного явления также может быть весьма значительным для этого питательного вещества. По данным Pallon et al. [22], калий накапливается в значительных количествах в спорах AMF. Результаты Ollson et al. [23] показали, что гифы и везикулы грибов также являются элементами с высоким содержанием калия, что в случае везикул как органов хранения кажется особенно интересным.Механизм захвата и распределения этого компонента в микоризных ассоциациях еще недостаточно изучен. Несмотря на отсутствие подробных данных по этому поводу, существуют исследования, свидетельствующие о положительном эффекте лечения микоризацией в отношении питания растений калием.

Культурные практики и факторы производства органических фруктов отличаются от более широко используемых интегрированных производств (IP) из-за ограниченного списка одобренных пестицидов и удобрений. В результате растущего интереса к этому виду производства разработка новых агротехнических методов, позволяющих улучшить минеральное питание растений, урожайность и качество плодов, является важной задачей.Основная цель нашего исследования состояла в том, чтобы определить влияние AMF и ризобактерий, способствующих росту растений (PGPR), на рост и пищевой статус различных сортов яблони, выращиваемых в условиях органического земледелия, что может повысить эффективность использования питательных веществ и продуктивность. Мы предположили, что использование посевного материала AMF + PGPR увеличивает присутствие микоризных структур в корнях и положительно влияет на усвоение питательных веществ, что приводит к лучшему питательному статусу яблонь в полевых условиях.Результаты этого исследования могут предоставить ценную информацию для практиков, заинтересованных в производстве органических яблок.

2. Материалы и методы

Испытание проводилось в экспериментальном саду в Варшаве, Виланов в Центральной Польше (N 52 ° 9′36,1 ″, E 21 ° 5′58,2 ″). Данные о погоде для экспериментального местоположения представлены на рисунке 1. Они были собраны с помощью полевой метеостанции Davis Vantage Pro 7, установленной в саду. Материал состоял из контрольных растений (неинокулированные деревья) и инокулированных деревьев сортов «Топаз», «Одра» и «Шопен» и выведенного клона U 8869 в условиях выращивания органических фруктов.Деревья книп на подвое M.9 были посажены весной 2011 г. с шагом 3,5 × 2 м на аллювиально-супесиальной аллювиальной почве в рамках экспериментального плана с раздельными блоками с 4 повторениями и по 3 дерева на делянку с 6 буферными деревьями между незасеянными. и инокулированные блоки растений. Деревья обучались в системе обучения веретеновых кустов. Управление полом в саду включало скашивание травы в переулках от 3 до 5 раз за сезон (в зависимости от погодных условий) и механическую обработку почвы в рядах деревьев с помощью навесного орудия роторного типа, оснащенного гидравлической системой, обеспечивающей доступ к площадь между деревьями и почвой обрабатывалась на глубину до 5 см дважды за вегетационный период — в апреле и октябре.Пробы почвы по 1500–2000 г каждая, состоящие из 15 подвыборок, собранных перед посадкой деревьев весной 2011 года с использованием установочного шнека для ступенчатого отбора проб (Eijkelklamp, Giesbeek, Нидерланды), представляли три слоя почвы (0–20, 21– 40 и 41–60 см) и сушили при комнатной температуре. Значения pH почвы измеряли в экстракте раствора 1M KCl с помощью pH-метра Elmetron CPC-505 (Elmetron, Забже, Польша). Гранулометрический анализ почв проводили по методу Касагранде с некоторыми модификациями [24].Содержание макроэлементов в 10-граммовых образцах почвы определяли по методу Эгнера-Рима для P и K и Schachtschabel для Mg, как описано Стафеккой и Комосой [25]. Содержание органических веществ определяли по методу Тюрина, описанному dkiewicz et al. [26]. Анализ почвы, взятой перед подготовкой участка под посадку деревьев, показал, что величина pH каждого слоя варьируется (таблица 1). В слое 0–20 см pH был слабокислым и достигал 6,23. Чем глубже были взяты пробы почвы, тем выше были отмечены значения pH.Как в слое 21–40, так и в слое 41–60 см почва характеризовалась щелочными значениями pH 7,3 и 7,5 соответственно. Принимая во внимание слой почвы и долю частиц почвы диаметром менее 0,02 мм в соответствии с пороговыми уровнями, разработанными Sadowski et al., [27], содержание доступных для растений форм фосфора и калия в почве было низким, в то время как высокое содержание доступного магния. Это оказало прямое влияние на очень низкое значение отношения K / Mg. Кроме того, в почве в слое 0–20 см содержание органического вещества превышало 2.5%, и его доля постепенно уменьшалась с увеличением глубины выборки.

Все агротехнические обработки проводились в соответствии с требованиями органического земледелия, т. Е. В ходе испытания синтетические агенты не использовались. В течение всего периода эксперимента ни удобрения, ни орошение не применялись. Яблочная парша контролировалась с помощью медных добавок и известковой серы. В 2013 г. были внедрены хищные клещи (Typhlodromus pyri) для борьбы с популяциями паутинных клещей и методы нарушения спаривания для борьбы с плодожоркой (Cydia pomonella).

Инокуляцию деревьев проводили в полевых условиях. Коммерчески доступный микробный посевной материал Micosat F (CCS Aosta, Quart, Италия) с общей концентрацией 10 ⁶ КОЕ · г ^-1 , содержащий измельченные и измельченные корни растений-хозяев со спорами и мицелием арбускулярных микоризных грибов (AMF) Glomus mosseae GP11, G. viscosum GC41, G. intraradices GB67 и стимулирующие рост растений ризобактерии (PGPR), Bacillus subtilis BA41 и Streptomyces spp. SB19, приготовленный в виде порошка, вносили в почвенные ямы глубиной 30 см во время посадки деревьев в дозе 10 г · дерево ^-1 , а затем каждый год эксперимента применяли дозу посевного материала 2 г · м ^-1 рядом с деревом, трижды каждый сезон с 3-недельными интервалами, первая доза применяется в начале мая.

Для оценки состояния питания деревьев собирали по 50 листьев с участка после завершения вегетативной фазы роста в конце июля каждого года исследования. Собранные листья брали со средней части однолетних побегов, сушили при 70 ° C в течение 24 ч и измельчали ​​в порошок, который использовали для определения содержания N, P, K и Mg. Содержание азота измеряли по методу Кьельдаля [28]. Элементы P, K и Mg были помечены методом атомно-эмиссионной спектроскопии с индуктивно связанной плазмой (ICP-AES) [29] с использованием спектрометра Thermo Scientific iCAP 6500 Duo (Thermo Fischer Scientific, Уолтем, Массачусетс, США) с аргоном при температуре 99.Чистота 9% в качестве газа-носителя после того, как образцы были обожжены в печи и переварены в 0,5 М растворе HCl. Пробы корней отбирались с поля каждый год в конце июня. Корни деревьев собирали с каждого дерева на участке с глубины до 30 см с помощью полевой лопаты и переносили в лабораторию, где их очищали под водопроводной водой. Образцы, содержащие не менее 20 г очищенных корней на участок, окрашивали в соответствии с методом, описанным Derkowska et al. [6] с использованием карбол фуксина в качестве красителя.Параметры частоты микоризы (F — доля фрагментов корня, в которых сформировались микоризные структуры), относительной интенсивности микоризы (RMI — доля площади колонизированных фрагментов корня, в которой сформировались микоризные структуры) и абсолютной интенсивности микоризы (AMI — доля микоризы). все участки корневых фрагментов, в которых развиваются микоризные структуры) оценивали на образцах [30] с помощью светового микроскопа Leica DM1000 (Leica, Wetzlar, Германия). Каждый образец представлял собой один участок и содержал тридцать частей корней длиной 1 см, помещенных в глицерин на предметное стекло микроскопа, которые были раздавлены покровным стеклом.Все значения параметров микориз были рассчитаны с использованием программного обеспечения MYCOCALC (INRA, Дижон, Франция) и даны в процентах.

Площадь листа измеряли для 50 листьев на делянке с использованием измерителя площади Li-3100 (Li-Cor, Линкольн, Северная Каролина, США). С этой целью образцы листьев были взяты с использованием той же процедуры, что и описанная для оценки статуса питания растений. Размер и рост дерева выражаются на основе площади поперечного сечения ствола (TCSA), которая выражается в см ² . Значения этого параметра рассчитывались исходя из диаметра ствола дерева, измеренного на высоте 30 см.Диаметр ствола измеряли на каждом дереве на участке сразу после посадки деревьев, а затем в октябре каждого года эксперимента.

Данные были проанализированы с использованием дисперсионного анализа (ANOVA) в программном пакете Statistica 13 (StatSoft, Краков, Польша). Средние значения были разделены апостериорными тестами Ньюмана – Кеулса с уровнем значимости p ≤ 0,05. Регрессионный анализ был выполнен с помощью программного обеспечения с открытым исходным кодом Weka (Университет Вайкато, Вайкато, Новая Зеландия) и представлен в виде графиков в Microsoft Excel.

4. Обсуждение

Органическое сельское хозяйство постоянно растет в европейских странах с 1991 года, когда были приняты первые в ЕС правила органического производства [31]. Можно ожидать, что эта тенденция сохранится, пока принципы органического земледелия будут строго соответствовать текущей стратегии развития «Зеленого курса» ЕС, которая, в частности, способствует устойчивому использованию ресурсов, включая почву, атмосферу и воду [32]. Ограничение негативного воздействия производства фруктов на окружающую среду может быть достигнуто за счет сокращения использования удобрений и повышения эффективности использования питательных веществ, что также приводит к снижению вымывания питательных веществ и более сбалансированному питанию растений.Это заставляет производителей искать методы, которые используют естественные процессы, положительно влияющие на растения. Наша цель в этом исследовании состояла в том, чтобы определить влияние инокуляции арбускулярных микоризных грибов (AMF) + растений, способствующих росту ризобактерий (PGPR) на органическое выращивание яблок и определение его влияния на пищевой статус и рост деревьев. В ходе исследования мы доказали, что использование микробиологического инокулята на ранней стадии развития сада привело к усилению взаимодействия микоризы и что метод внесения инокулята арбускулярных микоризных грибов, описанный в нашей работе, был очень эффективным с точки зрения колонизации корней AMF.В конце периода эксперимента значения частоты микоризы, полученные для инокулированных растений, были в среднем на 94,7%, что выше, чем на контрольных участках, а вариации по другим параметрам микориз были еще выше. Следует отметить, что также имела место местная колонизация корневой системы контрольных растений (без прививки) полезными грибами, встречающимися в природе в почве. Результаты, аналогичные полевому эксперименту, были также получены и ранее показаны другими авторами [33,34,35,36,37,38].Это указывает на широко распространенное присутствие микоризы в природе и доказывает, что в полевых условиях практически невозможно предотвратить взаимодействие между растением и AMF [15], особенно когда низкое содержание фосфатов и других питательных веществ не ограничивает взаимодействие растения с AMF [15]. 8,39,40,41]. Относительно высокие показатели структур AMF в корневой системе также повлияли на статус питания растений, но эффект не всегда бывает прямым и также зависит от рассматриваемого минерального элемента. В случае азота в 2012 и 2013 годах, за исключением сорта «Топаз», мы обнаружили, что инокулированные деревья показали более высокую концентрацию этого элемента в листьях.Отсутствие вариаций в 2014 году может быть результатом эффекта разбавления, который очень часто наблюдается из-за лучшего статуса азотного питания, что также имело место в нашем исследовании. Повышенное потребление азота оказало значительное влияние на рост деревьев, выраженное в площади поперечного сечения ствола (TCSA), и увеличило общую жизнеспособность деревьев. После четырехлетнего периода наблюдения деревья, обработанные инокулятом AMF, показали, что TCSA на 24% выше, чем у контрольных растений. Подобные результаты были ранее получены при выращивании яблок [33] и косточковых [42] в условиях Польши.В нашем эксперименте мы доказали, что использование инокулята AMF + PGPR влияет не только на размер дерева, но и приводит к увеличению площади листьев. Это открытие было доказано на протяжении всех лет испытаний и могло быть причиной того, что содержание фосфора и калия в листьях снизилось после микробной инокуляции в результате эффекта разбавления, который также наблюдался другими авторами [43,44,45]. Также возможно, что наличие хорошо распределенных и активных структур AM в корнях приводит к подавлению прямого пути фосфора в корнях и способствует усвоению микоризным трактом питательных элементов из почвы, а также распределению питательных веществ внутри органов растения в растении. корни широко заселены арбускулярными грибами.Этот механизм, о котором ранее сообщали другие авторы [43,44,46], может даже усилить наблюдаемый эффект разведения, но в нашем исследовании нет четких доказательств, подтверждающих это утверждение. В случае калия, о котором сообщили Ollson et al. [20], чтобы иметь сильную положительную корреляцию с фосфором в микоризных структурах, его пониженное содержание в листьях, подвергшихся инокуляции, похоже, имело аналогичный фон. Кроме того, анализ пробы почвы, проведенный перед установкой опытного образца, показал, что уровень калия низкий, а доля глинистых частиц достигает 37.2%. На экспериментальной площадке глинистые минералы в почве представлены в основном группами монтмориллонита, каолинита и иллита, хорошо известными своей тенденцией к сильной фиксации калия в межпакетных пространствах [47], что иногда приводит к заметному дефициту калия, наблюдаемому на листьях растений. прилегающие фруктовые участки [48]. В таких условиях дефицит калия в почве может сыграть роль триггера в изменении отношения растения к AMF к конкуренции в случае поглощения этого питательного вещества. Полученное более высокое содержание магния, определенное в листьях привитых яблонь, указывает на положительный эффект микоризы. на поглощение этого компонента из почвы, что также было подтверждено в других исследовательских работах [36,49,50,51,52].Некоторые авторы утверждали, что улучшение снабжения растений магнием является косвенным эффектом, связанным с одним из механизмов транспорта и поглощения этого элемента растением [44]. Механизм, который может быть ответственным за повышенное поглощение Mg привитыми деревьями в нашем испытании, — это лучшее поглощение воды, которое улучшает массовый поток через почву к корням деревьев. Этот вывод может быть подтвержден высоким содержанием магния, наблюдаемым в почве, которое не ограничивает его усвоение, и лучшим азотным питанием, которое связано с более высокой скоростью транспирации [53].Присутствие PGPR в микробном коктейле, который мы использовали в нашем эксперименте, также, по-видимому, повлияло на полученные результаты. Что касается регрессионного анализа, который показал некоторую корреляцию между параметрами микоризы и содержанием минералов в листьях, необходимо отметить, что значения r ² регрессионной модели не превышали 0,5. Это говорит о том, что улучшение колонизации AMF было не единственным фактором, который повлиял на изменение пищевого статуса неинокулированных и инокулированных деревьев в эксперименте, но что PGPR также мог сыграть свою роль.Это утверждение может быть подтверждено исследованиями других авторов, которые доказали влияние PGPR на рост, урожайность, качество урожая, а также на потребление макро- и микронутриентов [54,55,56]. Результаты по содержанию фосфора и азота в листьях могут также предполагать, что сорт «Топаз» по сравнению с другими используемыми сортами яблони, естественно, не проявляет такой сильной микоризной реакции роста. Сообщений об этом явлении у плодовых растений мало, а реакция роста микоризы обсуждается в основном на уровне отдельных видов растений [57,58,59], хотя, согласно Таварайе [60], она может также относиться к специфические сорта, что также подтвердили Berdeni et al.[35].

Искусственное индуцирование проблемы повторной посадки яблока с помощью инокуляции Penicillium claviforme на JSTOR

Абстрактный

Инокуляция корней проростков яблони Penicillium claviforme уменьшала рост растений и приводила к морфологическим изменениям корней, напоминающих те, которые обнаруживаются у сеянцев, выращиваемых в почве «проблема повторной посадки яблони» (почва, пораженная яблоками). Внесенный гриб сохранялся в ризосфере в течение 30-месячного периода испытаний. Количество колониеобразующих единиц (КОЕ) Peniciltium claviforme, а также «общее» количество КОЕ микромицетов были выше в ризоплане инокулированного проростка по сравнению с неинокулированными растениями.Количество КОЕ фитотоксических микромицетов в ризосферной почве инокулированных проростков также было пропорционально выше. Рост яблони также снижался, когда сеянцы инокулировали флуоресцентной бактерией Pseudomonas putida; Однако в корнях морфологических изменений не наблюдалось. Оба микроорганизма, занесенные в ризосферу проростков яблони, вызвали изменения в микробном сообществе. Инокуляция Penicillium claviforme и Pseudomonas putida вызвала уменьшение количества миколитических бактерий в ризоплане проростков яблони.

Информация о журнале

Plant and Soil публикует оригинальные статьи и обзорные статьи, исследующие взаимодействие биологии растений и почвоведения и предлагающие четкий механистический компонент. Сюда входят как фундаментальные, так и прикладные аспекты минерального питания, взаимоотношений растений и воды, симбиотических и патогенных взаимодействий растений и микробов, анатомии и морфологии корней, биологии почвы, экологии, агрохимии и агрофизики. Статьи, в которых обсуждается важная молекулярная или математическая составляющая, также попадают в рамки журнала.

Информация об издателе

Springer — одна из ведущих международных научных издательских компаний, издающая более 1200 журналов и более 3000 новых книг ежегодно по широкому кругу вопросов, включая биомедицину и науки о жизни, клиническую медицину, физика, инженерия, математика, компьютерные науки и экономика.

Картирование устойчивости цветков Malus × robusta 5 к бактериальному ожогу после искусственной инокуляции | BMC Plant Biology

1.

Hanke M-V, Flachowsky H. Obstzüchtung und wissenschaftliche Grundlagen. Капитель 13. Апфель ( Malus domestica ). Берлин: Springer-Verlag; 2017.

Google Scholar

2.

Winslow CE, Broadhurst J, Buchanan RE, Krumwiede C, Rogers LA, Smith GH. Семейства и роды бактерий: заключительный отчет комитета общества американских бактериологов по характеристике и классификации типов бактерий.J Bacteriol. 1920; 5 (3): 191–229.

CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

3.

Peil A, Bus VGM, Geider K, Richter K, Flachowsky H, Hanke MV. Повышение устойчивости к бактериальному ожогу яблони и груши. Int J Plant Breed. 2009; 3: 1-27.

Артикул Google Scholar

4.

Руссо Н.Л., Робинсон Т.Л., Фацио Дж., Олдвинкль Х.С. Антибиотикорезистентность подвоя яблони Будаговский 9.Завод Дис. 2008. 92 (3): 385–91.

PubMed Статья Google Scholar

5.

Ван дер Цвет Т., Оролаза-Хальбрендт Н., Целлер В. Фитофтороз: история, биология и управление. Глава 3. Убытки от бактериального ожога и хозяйственное значение болезни. Стр. 37–41. Сент-Пол: APS Press / Американское фитопатологическое общество; 2012.

Google Scholar

6. ​​

Уолш Ф., Смит Д.П., Оуэнс С.М., Даффи Б., Фрей Дж.Ограниченное использование стрептомицина в яблоневых садах не повлияло отрицательно на сообщества почвенных бактерий. Front Microbiol. 2014; 4: 383.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

7.

Джанесси Л., Сильверс С., Санкула С., Карпентер Дж .: Биотехнология растений: текущее и потенциальное влияние на улучшение борьбы с вредителями. Сельское хозяйство США: анализ 40 тематических исследований 2002 г., июньский отчет: 32.

Google Scholar

8.

Ngugi HK, Lehman BL, Madden LV. Мета-анализ множественной обработки продуктов, оцененных для борьбы с бактериальным ожогом в восточной части США. Фитопатология. 2011; 101 (5): 512–22.

CAS PubMed Статья PubMed Central Google Scholar

9.

О’Рурк Д., Яник Дж., Сансавини С. Динамика сортов яблони в мире. Хрон Хортик. 2003; 43: 10–3.

Google Scholar

10.

Aldwinckle HS, Gustafson HL, Forsline PL. Оценка основного подмножества коллекции зародышевой плазмы яблони Министерства сельского хозяйства США на устойчивость к бактериальному ожогу. Acta Hortic. 1999; 489: 269–72.

Артикул Google Scholar

11.

van der Zwet T, Keil HL. Фитофтороз, бактериальное заболевание розоцветных растений. USDA: Вахингтон, округ Колумбия; 1979.

Google Scholar

12.

Каленж Ф., Друэ Д., Денансе С., Ван де Вег В.Е., Бриссет Миннесота, Полин Дж. П., Дурель К.Э.Идентификация основного QTL вместе с несколькими второстепенными аддитивными или эпистатическими QTL для устойчивости к бактериальному ожогу яблони в двух родственных потомках. Theor Appl Genet. 2005. 111 (1): 128–35.

CAS PubMed Статья PubMed Central Google Scholar

13.

Хан М., Даффи Б., Гесслер С., Патокки А. QTL-картирование устойчивости яблони к бактериальному ожогу. Разведение молей. 2006. 17 (4): 299–306.

Артикул Google Scholar

14.

Пейл А., Гарсия-Либрерос Т., Рихтер К., Трогниц ФК, Трогниц Б., Ханке М.В., Флаховски Х. Веские доказательства наличия гена устойчивости к бактериальному ожогу Malus × robusta , расположенного в группе сцепления 3. Порода растений. 2007. 126 (5): 470–5.

CAS Статья Google Scholar

15.

Peil A, Hanke MV, Flachowsky H, Richter K, Garcia-Libreros T, Celton JM, Gardiner S, Horner M, Bus V. Подтверждение бактериального ожога QTL Malus × robusta 5 на группе сцепления 3.Acta Hortic. 2008. 793: 297–303.

CAS Статья Google Scholar

16.

Durel CE, Denancé C, Brisset MN. Два различных основных QTL устойчивости к бактериальному ожогу совместно локализуются в группе сцепления 12 в генотипах яблони «Evereste» и Malus floribunda , клоне 821. Геном. 2009. 52 (2): 139–47.

CAS PubMed Статья PubMed Central Google Scholar

17.

Emeriewen OF, Peil A, Richter K, Zini E, Hanke MV, Malnoy M. Устойчивость к бактериальному ожогу Malus × arnoldiana контролируется локусом количественных признаков, расположенным на дистальном конце группы сцепления 12. Eur J Plant Патол. 2017; 1011: 1011–8.

Артикул CAS Google Scholar

18.

Эмериевен О.Ф., Рихтер К., Килиан А., Зини Е., Ханке М.В., Малной М., Пейл А. Идентификация локуса основных количественных признаков устойчивости к бактериальному ожогу у диких видов яблонь Malus fusca .Разведение молей. 2014; 34 (2): 407–19.

CAS Статья Google Scholar

19.

Fahrentrapp J, Broggini GAL, Kellerhals M, Peil A, Richter K, Zini E, Gessler C. Ген-кандидат на устойчивость к бактериальному ожогу в Malus x robusta 5 кодирует CC-NBS. -LRR. Древовидные генетические геномы. 2013; 9 (1): 237–51.

Артикул Google Scholar

20.

Broggini GA, Wöhner T, Fahrentrapp J, Kost TD, Flachowsky H, Peil A, Hanke MV, Richter K, Patocchi A, Gessler C.Разработка устойчивости к бактериальному ожогу у сорта яблони ‘Gala’ с использованием гена устойчивости FB_MR5 CC-NBS-LRR Malus x robusta 5. Plant Biotechnol J. 2014; 12 (6): 728–33.

CAS PubMed Статья Google Scholar

21.

Emeriewen OF, Richter K, Piazza S, Micheletti D, Broggini GAL, Berner T., Keilwagen J, Hanke MV, Malnoy M, Peil A. К клонированию FB_Mfu10 на основе карты: идентификация рецептороподобного Ген-кандидат киназы, лежащий в основе локуса устойчивости к бактериальному ожогу Malus fusca в группе сцепления 10.Разведение молей. 2018; 38 (8): 106.

Артикул CAS Google Scholar

22.

Norelli JL, Aldwinckle HS, Beer SV. Дифференциальное взаимодействие хозяина и патогена между сортами яблони и штаммами Erwinia amylovora . Фитопатология. 1984; 74: 136–9.

Артикул Google Scholar

23.

Фацио Дж., Олдвинкл Х.С., Маккуин Р.П., Робинсон Т. Дифференциальная восприимчивость к бактериальному ожогу коммерческих и экспериментальных сортов корневищ яблони.Acta Hortic. 2006; 704: 527–30.

Артикул Google Scholar

24.

Эмериевен О.Ф., Вёнер Т., Флаховски Х., Пейл А. Взаимодействия Malus Hosts – Erwinia amylovora: патогенность штамма и механизмы устойчивости. Фронтальный завод им. 2019; 10: 551.

PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

25.

Норелли Д.Л., Олдвинкль Х.С. Дифференциальная восприимчивость Malus spp.сорта Робуста 5, Новоле и Оттава 523- Erwinia amylovora . Завод Дис. 1986; 70 (1017): 1019.

Google Scholar

26.

Пейл А., Флачовски Х., Ханке М.-В., Рихтер К., Роде Дж. Инокуляция потомства Malus × robusta 5 с устойчивостью к разрушению штамма против бактериального ожога выявляет незначительный QTL на LG5. Acta Hortic. 2011; 896: 357–62.

Артикул Google Scholar

27.

Vogt I, Wöhner T., Richter K, Flachowsky H, Sundin GW, Wensing A, Savory EA, Geider K, Day B, Hanke MV, et al. Отношения ген-ген в системе хозяин-патоген Malus x robusta 5- Erwinia amylovora . Новый Фитол. 2013; 197 (4): 1262–75.

CAS PubMed Статья PubMed Central Google Scholar

28.

Wöhner TW, Flachowsky H, Richter K, Garcia-Libreros T, Trognitz F, Hanke MV, Peil A.QTL-картирование устойчивости к бактериальному ожогу у Malus x robusta 5 после инокуляции различными штаммами Erwinia amylovora . Разведение молей. 2014; 34 (1): 217–30.

Артикул Google Scholar

29.

Wöhner T, Richter K, Sundin GW, Zhao Y, Stockwell VO, Sellmann J, Flachowsky H, Hanke MV, Peil A. Инокуляция генотипов Malus набором из штаммов Erwinia amylovora указывает на ген- связь фор-гена между эффекторным геном eop1 и Malus floribunda , , 821 и Malus ‘Evereste’.Завод Патол. 2018; 67: 938–47.

Артикул CAS Google Scholar

30.

Thomson SV. Эпидемиология бактериального ожога. В: Ваннест Дж. Л., редактор. Фитофтороз. Болезнь и ее возбудитель Erwinia amylovora. Отредактировано. Нью-Йорк: CABI Puplishing; 2000. с. 9–36.

Глава Google Scholar

31.

Cellini A, Giacomuzzi V, Donati I, Farneti B, Rodriguez-Estrada MT, Savioli S, Angeli S, Spinelli F.Вызванные патогенами изменения цветочного аромата могут увеличить опосредованное пчелами распространение Erwinia amylovora. ISME J. 2019; 13 (4): 847.

CAS PubMed Статья Google Scholar

32.

Lespinasse Y, Paulin JP. Программа селекции яблонь на устойчивость к бактериальному ожогу: использованная стратегия и первые результаты. Acta Hortic. 1990; 273: 285–91.

Артикул Google Scholar

33.

Maas Geesteranus HP, Heyting J. Значение инокуляции верхушки листа для демонстрации генетической устойчивости у видов Pomoidae к Erwinia amylovora (Burr.) Winslow et al. Acta Hortic. 1981; 117: 75–82.

Артикул Google Scholar

34.

Кляйнхемпель Х, Кеглер Х, Фике В., Шефер Х. Дж. Методы испытаний яблок на устойчивость к бактериальному ожогу. Acta Hortic. 1984; 151: 261–5.

Артикул Google Scholar

35.

Thibault B, Le Lezec M. Sensibilité au feu bactérien des Principales varés de pommier et de poirier utilisées в Европе. В: Паулин Дж. П., редактор. Фитофтороз Pomoidae (Erwinia amylovora Burill Winslow et al) Прикладные исследования в Европе (1978–88), EUR 12601. Под редакцией. Брюссель-Люксембург; 1990. Комиссия Европейских сообществ. п. 96–109.

36.

Маруфи А., Мостафави М. Оценка устойчивости сортов яблони, груши и айвы к бактериальному ожогу. Acta Hortic.1996; 411: 395–9.

Артикул Google Scholar

37.

Ле Лезек М., Паулин Дж.П., Леконт П. Восприимчивость побегов и цветков к бактериальному ожогу сортов яблони. Acta Hortic. 1987; 217: 311–5.

Артикул Google Scholar

38.

Фаркас А., Михалик Э., Доргай Л., Бубан Т. Цветочные особенности, влияющие на инфекцию бактериального ожога и борьбу с ним. Деревья. 2012; 26 (1): 47–66.

Артикул Google Scholar

39.

Pusey P, Curry E. Температура и возраст семечковых цветков связаны с колонизацией Erwinia amylovora и антагонистами. Фитопатология. 2004. 94 (8): 901–11.

CAS PubMed Статья Google Scholar

40.

Пьюзи П., Смит Т. Связь возраста цветков яблони с заражением гипантия Erwinia amylovora. Завод Дис. 2008. 92 (1): 137–42.

CAS PubMed Статья PubMed Central Google Scholar

41.

Томсон С., Гук С. Влияние возраста цветков яблони на рост Erwinia amylovora и средства биологической борьбы. Завод Дис. 2003. 87 (5): 502–9.

CAS PubMed Статья PubMed Central Google Scholar

42.

Спинелли Ф., Чамполини Ф., Крести М., Гейдер К., Коста Г. Влияние стигматической морфологии на колонизацию цветов Erwinia amylovora и Pantoea agglomerans. Eur J Plant Pathol. 2005. 113 (4): 395–405.

Артикул Google Scholar

43.

Спинелли Ф., Ваннест Дж., Чамполини Ф., Крести М., Радемахер В., Гейдер К., Коста Г. Возможности и ограничения ацилциклогександионов для борьбы с фитофторозом яблони и груш, вызываемым Erwinia amylovora. Завод Патол. 2007. 56 (4): 702–10.

CAS Статья Google Scholar

44.

Pusey P. Действие нектара на микробные антагонисты оценивали для использования в борьбе с бактериальным ожогом семечковых плодов. Фитопатология. 1999. 89 (1): 39–46.

CAS PubMed Статья PubMed Central Google Scholar

45.

Гардинер С.Е., Норелли Д.Л., де Сильва Н., Фацио Дж., Пейл А., Малной М., Хорнер М., Боватт Д., Карлайл С., Ведов С. и др. Предполагаемые маркеры генов устойчивости, связанные с локусами количественных признаков устойчивости к бактериальному ожогу у образцов Malus ‘ Robusta 5′. BMC Genet. 2012; 13:25.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

46.

Хан М., Чжао Ю., Корбан С. Молекулярные механизмы патогенеза и устойчивости к бактериальному патогену Erwinia amylovora , возбудитель бактериального ожога Rosaceae . Plant Mol Biol Rep. 2012; 30 (2): 247–60.

CAS Статья Google Scholar

47.

Харшман Дж. М., Эванс К. М., Аллен Х., Поттс Р., Фламенко Дж., Олдвинкль Х. С., Вишневски М.Э., Норелли Дж. Л.. Устойчивость к бактериальному ожогу у диких образцов Malus sieversii .Завод Дис. 2017; 101 (10): 1738–45.

PubMed Google Scholar

48.

Ван дер Цвет Т., Оролаза-Хальбрендт Н., Целлер В. Фитофтороз: история, биология и управление. Глава 11. Влияние условий хозяина, культурных обычаев и окружающей среды на развитие болезни. Стр. 183–193. Сент-Пол: APS Press / Американское фитопатологическое общество; 2012.

Google Scholar

49.

Норелли Дж.Л., Джонс А.Л., Олдвинкл Х.С.Борьба с бактериальным ожогом в двадцать первом веке: использование новых технологий, повышающих сопротивляемость хозяев яблони. Завод Дис. 2003. 87 (7): 756–65.

PubMed Статья PubMed Central Google Scholar

50.

Aldwinckle H, LoGiudice N, Robinson T., Holleran H, Fazio G, Johnson W., Norelli J. Устойчивость подвоев яблони к бактериальному ожогу, вызванному внутренним перемещением Erwinia amylovora от привоев.Acta Hortic. 2003; 663: 229–34.

Google Scholar

51.

Лоджудице Н., Альдвинкль Х., Робинсон Т., Фацио Г. Природа устойчивости подвоя яблони ´ B. 9 ‘к бактериальному ожогу. Acta Hortic. 2004; 704: 515–20.

Google Scholar

52.

Хорнер М., Хаф Э., Хеддерли Д., Хау Н., Бус В. Сравнение методологий скрининга устойчивости к бактериальному ожогу. Новый Z Plant Prot. 2014; 67: 145–50.

Google Scholar

53.

Chagné D, Vanderzande S, Kirk C, Profitt N, Weskett R, Gardiner SE, Peace CP, Volz RK, Bassil NV. Валидация маркеров SNP для определения качества плодов и локусов устойчивости к болезням яблони ( Malus × domestica Borkh.) С использованием платформы OpenArray®. Hortic Res. 2019; 6 (1): 30.

PubMed PubMed Central Статья CAS Google Scholar

54.

King EO, Ward MK, Raney DE. Две простые среды для демонстрации пиоцианина и флуоресцина. Перевод Рез. 1954. 44 (2): 301–7.

CAS Google Scholar

55.

Венсинг А., Гернольд М., Гейдер К. Обнаружение видов Erwinia во флоре яблони и груши методом масс-спектроскопии целых клеток и с новыми праймерами для ПЦР. J Appl Microbiol. 2012; 112 (1): 147–58.

CAS PubMed Статья PubMed Central Google Scholar

56.

Чагне Д., Кроухерст Р.Н., Троджио М., Дэйви М.В., Гилмор Б., Лоули С., Вандерзанд С., Хелленс Р.П., Кумар С., Честаро А. и др. Обнаружение, проверка и разработка массива SNP 8K для Apple по всему геному. PLoS One. 2012; 7: e31745.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google Scholar

57.

Gardiner SE. Новые технологии генетических маркеров революционизируют селекцию яблок. Acta Hortic. 2017; 1174: 23–30.

Артикул Google Scholar

58.

Янш М., Броджини Г.Л., Вегер Дж., Автобус В.М., Гардинер С., Бассетт Х., Патокки А. Идентификация SNP, связанных с восемью локусами устойчивости к болезням яблони. Разведение молей. 2015; 35 (1): 1–21.

Артикул CAS Google Scholar

59.

Van Ooijen JW. MapQTL®5, программное обеспечение для картирования локусов количественных признаков в экспериментальных популяциях. Kyazma B.V: Вагенинген, Нидерланды; 2004.

Google Scholar

60.

Шабенбергер О. Введение в процедуру GLIMMIX для обобщенных линейных смешанных моделей, Труды SUGI 30; 2005. с. 196–30.

Google Scholar

терминов. Как посадить яблоню в дикой дичи

Купить хорошую яблоню не так-то просто. Часто на рынках дикорастущие растения продаются под видом сортовых, и даже в специализированных магазинах их можно перепутать. Второй нюанс — хорошие сорта обычно рассчитаны на теплый, южный климат, а в более прохладных регионах подмерзают.Никто не хочет выращивать на несколько лет яблоню, которая в один прекрасный момент замерзнет. Поэтому остается последний вариант — прививка яблонь на дикую дичь. Это непростая задача, вам придется пробовать ее много раз, прежде чем ваши прививки начнут приживаться и расти, но это умение дает неограниченные возможности для вашего сада.

Подвой — задача номер один

Яблоня прививается к игре, если есть хорошее и сильное растение. Он обеспечит культурную яблоню питательными веществами за счет мощной корневой системы.Если у вас уже есть дикая яблоня на дачном участке, она послужит подвой. Можно поспрашивать у соседей-садоводов, наверняка у одного из них на участке корень старой яблони, потерявший культурную часть, а из-под прививки появились ростки диких деревьев. Достаточно их выкопать и дать возможность прижиться на постоянном месте проживания.

Откроем один секрет: прививка яблони на дикой груше проходит гораздо успешнее, чем аналогичное растение.Поэтому, если у вас есть возможность посадить на участке дикую грушу, обязательно используйте ее.

Выращивание подвоя из семян подсолнечника

Это длительный процесс, но если вы не планируете вакцинацию в ближайшее время, но хотите иметь на участке хороший подвой, то стоит посадить для этих целей несколько деревьев. Для сбора семян лучше всего подходят зимостойкие местные сорта яблонь. Семена собирают от спелых плодов, собранных осенью. Желательно брать самые большие и красивые.

Семена плодов хорошо промывают и тщательно просушивают. Если сбор происходит осенью, то семена следует убирать примерно до середины января. Затем их ждет стратификация, для этого семя нужно залить речным песком и поставить на нижнюю полку холодильника. Заменить процедуру стратификации можно посевом на грядку. С осени выберите удобное место и заделайте семена на глубину 3-4 см. Они всю зиму пролежат под снегом, а весной дадут дружные всходы.До осени они превратятся в маленькие, но крепкие саженцы.

Однолетние саженцы

Мы все еще говорим о том, как вырастить дикое яблоко для вакцинации. Прошло первое лето, всходы окрепли, теперь их нужно выделить на основное место. Еще через два года они превратятся в настоящие молодые деревца, на которые можно будет высаживать культурные растения. К этому времени нужно успеть подготовить привой. Для этого вам потребуются красивые спелые плоды, которые вы хотите выращивать на своем участке.Порядок выращивания абсолютно идентичен описанному нами выше. Только времени понадобится чуть меньше. Если посеять семена осенью в саду, то к следующей осени они станут тонкими всходами, а через год — настоящими черенками. Поскольку подвой уже достаточно крепкий, прививка яблонь на дикую дичь может пройти довольно успешно.

Размножение яблони черенками

Яблоню прививают в природу весной, когда есть готовый подвой и подходящий стебель.Для начала подойдет молодой саженец или растение, выращенное из семян. Отличным вариантом станет дикая яблоня, выращенная на природе. Этот вариант лучше всех остальных, ведь дикорастущее дерево максимально адаптировано к климатическим условиям вашего региона.

Необязательно долго выращивать семечко из семян, можно купить на рынке, там продают сортовые саженцы, а еще проще — срезать деревце у знакомого. Остальное — дело техники. Однако нужно не только уметь сажать яблоню, но и обладать достаточными навыками.Возможно, кто-то из ваших знакомых уже проделал эту процедуру и сможет вам помочь.

Заготовка черенков

Прививка яблонь весной на дикую дичь должна производиться за один день. То есть крепкие веточки или однолетние побеги нужно готовить в тот же день, когда вы собираетесь проводить процедуру. Не храните на привое слишком много материала, оцените свои возможности и запас времени. После того, как от материнского растения срезан стебель, с него удаляют все листья, оставляя только часть черешков.Дальнейшие манипуляции зависят от выбранной техники. Чтобы вас было легче идентифицировать, мы опишем самые основные типы прививок, которые вы можете использовать.

Основные правила

Теперь подробнее поговорим о том, как сажать яблоню с дикой природой. Однако прежде всего подчеркнем важность соблюдения нескольких правил. Первое: независимо от времени вакцинации, у стебля, то есть прививки, должны быть еще не начавшие развиваться почки.Для соблюдения этого правила их собирают в ноябре / марте и хранят в холодильнике или погребе при температуре +2 … -4 ^o C. Когда яблони проводят весной вакцинацию для диких животных? Сроки диктуют второе правило, которое гласит, что вакцинировать нужно, когда начнется сокодвижение. В этом случае с яблонями можно не торопиться: все косточковые можно сажать до конца цветения. И последнее: культурные растения высаживаются на дикорастущие растения, максимально адаптированные к особенностям региона.

Подготовка необходимого инструмента

Вам понадобится нож, и всегда следите за тем, чтобы лезвие было очень острым и чистым. Проверить можно несложно: если лезвие легко режет три-четыре листа бумаги за раз, то вполне подойдет. Кроме того, вам понадобится секатор и пила, полиэтиленовая пленка или изолента. И не забудьте приготовить садовый вар и прозрачные пакеты из плотного полиэтилена.

Инструменты готовы, инвентарь растет в нужном месте, теперь дело за черенками.Таким образом, потребуются хорошо созревшие однолетние побеги без бутонов. Желательно, чтобы они были отрезаны с южной стороны кроны. Внимательно посмотрите на ветку, которую вы посадите. У него должна быть гладкая древесина, светлый срез и здоровые, не потемневшие почки. Теперь давайте рассмотрим основные способы прививки яблони в дикую дичь, чтобы внести элемент практики в наше отступление.

Прививка к внесению, или простая копуляция

Выполняется в том случае, если диаметр привоя и подвоя примерно одинаков.Этот метод не требует особых навыков и легко под силу любому садоводу, даже новичку. Подготовить подвой нужно — для этого выберите на стволе или ветке ровное место без наростов и почек, диаметр которого совпадает с черенком. Теперь точным движением «на себя» вам нужно будет сделать косой плавный срез. Его диаметр теперь превышает размер привоя. Берем побег и вырезаем из его средней части стебель. Одним движением делаем на нем косой надрез.Теперь дело в технике: мы прикладываем оба среза друг к другу. Обратите внимание: камбиальные слои обязательно должны сочетаться. При этом нельзя касаться срезов руками, чтобы не было заражения болезнетворными бактериями. Место стыка плотно обматывают узкой полиэтиленовой или изолентой, не липкой стороной к коре. Прививка яблонь на утку дикой груши происходит с такой же эффективностью, как и дикая дичь растения этого вида. Учтите, что завязать нужно так хорошо, чтобы даже при усилии обрезки не вытащить обвязку.Верхняя часть покрыта садовым лаком. При проведении процедуры ранней весной на место вакцинации можно положить полиэтиленовый пакет. Верхний срез не должен касаться сумки.

Улучшенное копуляция

Это более сложный, но эффективный метод, позволяющий проводить вакцинацию, даже если диаметр подвоя и прививки не совпадают. Именно таким способом чаще всего проводится прививка яблок и груш осенью в дикой природе. Рассмотрим подробнее саму технику.

Отличается тем, что на косых участках подвоя и привоя выполнены «язычки». Для этого на срезе подвоя делают неглубокий продольный надрез. То же под тем же углом проделывается и на ложе. В результате эти два «языка» соединяются друг с другом, образуя лучшую и более надежную связь. Это облегчает процедуру обертывания и закрепления двух прививочных элементов, а также обеспечивает более быстрое сращение.

Прививка коры «

Этот метод популярен в случаях, когда тонкий молодой стебель сажается на взрослый привой или толстую ветку.Идеально практиковать этот вариант с началом сокодвижения, тогда кора легко отделяется от ствола. Подготовьте место для прививки, для этого хорошо протрите кору, освободив ее от грязи и пыли. Теперь острым ножом нужно сделать вертикальный надрез под корой. Одновременно необходимо разрезать продольный разрез и хорошенько очистить поверхность. Остается вставить привой глубоко под кору, верхняя часть среза должна полностью входить под нее. Теперь, как и в других случаях, необходимо плотно разместить место прививки, чтобы зафиксировать его и обеспечить слияние.

Прививка «в расщепление»

Это один из самых популярных методов вакцинации, который легко выполнит любой садовод. Поэтому рассмотрим подробнее, как сажать яблони весной весной. Что самое примечательное, этот метод можно применять, когда диаметры приклада и прививки одинаковы или сильно отличаются друг от друга. Вот такой разброс. Чаще всего его применяют, когда диаметр подвоя больше, чем у привоя.Однако, судя по отзывам и опыту опытных садоводов, вакцинация «под корку» в этом случае более эффективна. Однако у этого метода есть и положительный момент: его можно применять в период покоя, перед началом сокодвижения.

Техника относительно проста: ложа немного укорачивается, после чего раскалывается по центру, а в спайность вставляется клин. Черенки для прививки берут длиной 25 мм, с 2 или 4 почками. Нижний срез прорезан двусторонней клиньей.Здесь следует учитывать тот факт, что толщина корня корневища подвоя больше, чем у черенков, поэтому последний вставляется на всю глубину пропила в скол и немного смещается вглубь конопли. . Теперь клин удален, а шток остается плотно зажатым. Теперь необходимо плотно привязать привой к подвою и залить все садовым дымом. Чтобы вакцина прижилась, на нее надевают полиэтиленовый пакет.

Как ухаживать за прививками

Как только на приове появляются новообразования, необходимо удалить ленту, которая обеспечила надежную фиксацию черенков и подвоя.Делается это острым ножом. Полиэтиленовый пакет тоже нужно снимать вовремя, когда на привитом растении появятся первые листочки. Все ростки, появившиеся ниже прививки, следует удалить, так как культурных плодов они не дадут, но лишат жизнеспособности.

Вакцинация — доступное средство для каждого садовода, нужно лишь научиться им пользоваться. Немного практики — и на вашем участке будут расти сорта яблок.

Гриб Морель — Другие методы Посевы деревьев: Т.к…

Другие методы

Инокулированные деревья:

Поскольку сморчки часто растут возле определенных деревьев, логично, что заражение корней этих деревьев мицелием сморчков может привести к производству грибов.

Самый простой способ сделать это — рассыпать споры описанным выше методом навозной жижи возле основания дерева (вяз или ясень). Другие способы включают в себя выращивание молодого дерева:

«Заражение» корней молодого дерева грибовидными грибами.Вам понадобится очень молодой вяз, ясень или яблоня и немного грибов из сморчков. Посадите дерево и создайте икру вместе, рассыпав икру по корням дерева. Ухаживайте за ним, как за любым молодым деревцем выбранной вами породы.
Закупка привитых деревьев. Вы можете купить молодые деревья, зараженные спорами / мицелием сморчков, в Интернете. К ним прилагаются инструкции по уходу, и, если вы будете внимательно им следовать, через несколько лет вы сможете выращивать грибы сморчков.
Выращивание в помещении:

Не думаете, что у вас есть желание вырастить молодое деревце? Вы всегда можете попробовать последний и самый сложный метод, упомянутый на этой странице: выращивание сморчков в помещении.

В течение многих лет эта техника считалась невозможной. Многие пытались выращивать сморчки в домашних условиях, но безуспешно.

Выращивание грибов сморчка может занять годы, но это очень полезно! Рональд Д. Оуэр сообщил о первом истинном успехе в 1982 году. В конце концов Оуэр получил патент вместе с Гэри Миллсом и Джеймсом Малаховски. Их работа подготовила почву для выращивания сморчков в домашних условиях.

Миллс создал компанию, занимающуюся крупномасштабным выращиванием, о которой вы можете прочитать больше в этой статье, опубликованной в Michigan State University News.

Так что да, их можно выращивать в помещении, но маловероятно. Процесс аналогичен другим типам выращивания грибов:

Выращивание мицелия сморчков из спор или небольшого кусочка гриба на питательной агаризованной среде.
Стерильный перенос мицелия из агара в емкость для нерестилищ, которая представляет собой стерилизованную емкость с семенами ржи или другим зерном. Мицелий колонизирует эти банки примерно через месяц или два. Вы увидите, как образуются склероции.
Перенос склероций с зернового нерестилища на специальный субстрат из песчаной почвы и щепы.В конечном итоге они превратятся в грибы при специально контролируемых условиях окружающей среды и удачи.
Хорошо, из приведенных выше указаний это звучит намного проще, чем есть на самом деле. Хотя я выращиваю грибы в помещении, я никогда не пробовал использовать сморчки, поэтому вдаваться в подробности было бы просто плагиатом чужой работы.

Роль микоризы в минеральном питании плодовых деревьев

Автор: I.Ortas Ключевые слова: микоризы, плодовое дерево, питание растений DOI: 10.17660 / ActaHortic.2018.1217.34 Цитрусовые, вишня, слива, персик, яблоко, груша, нектарин, абрикос, виноград, киви, гранат, инжир, оливки и фисташки, а также некоторые местные фрукты, такие как дикая черная вишня и пекан, являются важными видами фруктов в садоводстве умеренного климата, которые вызывают большой интерес. фермерам.Корни этих видов естественным образом заражены микоризными грибами. Поскольку время сбора урожая фруктов в средиземноморских климатических условиях наступает раньше, чем во многих других регионах, производители садоводства получают экономические преимущества. Многие почвы в Средиземноморском регионе испытывают дефицит питательных веществ для растений (таких как N, P, Zn, Fe и Mn) из-за высокого содержания глины и извести, часто в сочетании с щелочным pH и ограниченными водными ресурсами. Для оптимального роста растений и получения хорошего урожая используются химические удобрения.Однако чрезмерное использование химических удобрений отрицательно сказывается на жизнеспособных почвенных микроорганизмах, особенно микоризных грибах. Последние тенденции в области защиты окружающей среды и спроса на здоровые и экологически чистые продукты питания предполагают минимальное использование химикатов в сельскохозяйственном производстве или их полное отсутствие. Микоризные грибы могут способствовать росту корней растений в малообеспеченных почвах и в условиях стресса окружающей среды. Инокуляция микоризой может способствовать производству высококачественных фруктовых деревьев со сбалансированным потреблением минеральных питательных веществ.В этой работе было исследовано влияние микоризных грибов на рост и потребление питательных веществ подвоей вишни, виноградной лозы, инжира и банана в процессе акклиматизации и укоренения. Саженцы банана и инжира также были выращены путем микроразмножения. Использовали несколько видов микоризных грибов. Инокулированные микоризой растения имели высокий сухой вес побегов и корней, большее поглощение питательных веществ, чем немикоризные проростки. В полевых условиях было успешно продемонстрировано действие нескольких видов микоризы на апельсиновые, мандариновые и лимонные деревья.Инокуляция микоризой также значительно увеличила поглощение P и Zn. Различные микоризные грибы по-разному влияли на поглощение питательных веществ, и этот эффект зависел от вида. Была оценена микоризная зависимость ряда древесных пород. Было обнаружено, что многие растения, в том числе цитрусовые, фисташки, вишня, бананы и подвои виноградной лозы, зависят от микоризы для питания фосфатом. В целом можно сделать вывод, что использование AM-грибов может внести полезный вклад в рост садовых растений, усвоение питательных веществ, а также качество фруктов. Загрузить Adobe Acrobat Reader (бесплатное программное обеспечение для чтения файлов PDF)

.